Биологические функции кобальта, токсикология и обнаружение в антидопинговом контроле
https://doi.org/10.32362/2410-6593-2021-16-4-318-336
Аннотация
Цели. В последнее десятилетие чрезвычайную популярность в спорте высших достижений приобрели стимуляторы кроветворения. Этот факт подтверждают и участившиеся громкие допинговые скандалы, связанные с их употреблением. Соли кобальта относятся к данному классу веществ, их использование приводит к увеличению кислородной емкости крови и к мощной стимуляции обменных процессов, что дает несомненные конкурентные преимущества. Применение солей кобальта регламентировано в соответствии с Запрещенным списком Всемирного антидопингового агентства. В настоящее время проблематике выявления злоупотреблений солями кобальта в антидопинговом контроле посвящено всего несколько работ. Лишь единичные лаборатории вводят определение солей кобальта в свою методологическую базу. Цель данного обзора состоит в том, чтобы обратить внимание научного сообщества на токсичность соединений кобальта, последствия их приема, фармакокинетику, проблематику и способы обнаружения ввиду их доступности на современном рынке и участившихся случаев злоупотребления ими.
Результаты. В представленном обзоре рассмотрены основные биологические функции кобальта и клеточные уровни воздействия, токсичность и симптоматика при отравлении его солями. Обобщены и систематизированы литературные данные по основным используемым методам идентификации кобальта как допингового агента. Особое внимание уделено содержанию кобальта в биологически-активных добавках, при приеме которых спортсмен может сдать положительный допинг-тест на кобальт.
Выводы. На основе анализа перспективных подходов и методов определения кобальта, сделан вывод о несомненном преимуществе высокоэффективной жидкостной хроматографии в сочетании с масс-спектрометрией с индуктивно-связанной плазмой для детекции кобальта как допингового агента. Отсутствие четких требований к методам идентификации со стороны ВАДА и обязательности определения кобальта, несомненно, делает привлекательным прием его солей недобросовестными спортсменами. Ввиду этого существует необходимость внедрения вышеуказанного метода в практику антидопинговых лабораторий в ближайшем будущем.
Ключевые слова
Об авторах
И. В. ПронинаРоссия
Пронина Ирина Валерьевна, к.б.н., главный специалист отдела допингового контроля; старший научный сотрудник лаборатории патогеномики и транскриптомики
105005, Москва, Елизаветинский переулок, дом 10, стр. 1
125315, Москва, ул. Балтийская, д. 8
Scopus Author ID 8161867200
ResearcherID G-3951-2014
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Е. С. Мочалова
Россия
Мочалова Елена Сергеевна, исполняющий обязанности директора Национальной антидопинговой лаборатории (Института)
105005, Москва, Елизаветинский переулок, дом 10, стр. 1
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Ю. А. Ефимова
Россия
Ефимова Юлия Александровна, к.х.н., доцент, кафедра аналитической химии им. Алимарина И.П. Института тонких химических технологий им. М.В. Ломоносова
119571, Москва, пр. Вернадского, д. 86
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
П. В. Постников
Россия
Постников Павел Викторович, к.х.н., начальник отдела допингового контроля
105005, Москва, Елизаветинский переулок, дом 10, стр. 1
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Список литературы
1. Nieboer E., Sanford W.E. Essential, toxic and therapeutic functions of metals (including determinant of reactivity). In: Rev. Biochem. Toxicol. New York: Elsevier; 1985;7:205–245
2. Salnikow K., Donald S.P., Bruick R.K., Zhitkovich A., Phang J.M., Kasprzak K.S. Depletion of intracellular ascorbate by the carcinogenic metals nickel and cobalt results in the induction of hypoxic stress. J. Biol. Chem. 2004;279(39):40337–40344. https://doi.org/10.1074/jbc.m4030572003
3. Lippi G., Franchini M., Guidi G.C. Cobalt chloride administration in athletes: a new perspective in blood doping? Br. J. Sports Med. 2005;39(11):872–873. https://doi.org/10.1136/bjsm.2005.019232
4. Jelkmann W. Erythropoiesis stimulating agents and techniques: a challenge for doping analysts. Curr. Med. Chem. 2009;16(10):1236–1247. https://doi.org/10.2174/092986709787846668
5. Lippi G., Franchini M., Guidi G.C. Blood doping by cobalt. Should we measure cobalt in athletes? J. Occup. Med. Toxicol. 2006;1:18. https://doi.org/10.1186/1745-6673-1-18
6. Lippi G., Montagnana M., Guidi G.C. Albumin cobalt binding and ischemia modified albumin generation: an endogenous response to ischemia? Int. J. Cardiol. 2006;108(3):410–411. https://doi.org/10.1016/j.ijcard.2005.03.040
7. Davis J.E., Fields J.P. Experimental production of polycythemia in humans by administration of cobalt chloride. Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1958;99(2):493–495. https://doi.org/10.3181/00379727-99-24395
8. Моргулис И.И., Хлебопрос Р.Г. Биологическая роль кобальта. Красноярск: Красноярский научный центр СО РАН Сибирский федеральный университет; 2005. 24 с. URL: http://modernproblems.org.ru/ecology/25-hlebopos10. html (дата обращения 12 мая 2021 г.)
9. Кудрин А.В. Металлы и протеолитические ферменты. Вопр. биол. мед. фарм. химии. 1999;(3):19–24.
10. Taylor A., Marks V. Cobalt: a review. J. Hum. Nutr. 1978;32(3):165–177. https://doi.org/10.3109/09637487809144525
11. Ueno M., Seferynska J., Beckman B., Brookins J., Nakashima J., Fisher J. W. Enhanced erythropoietin secretion in hepatoblastoma cells in response to hypoxia. Am. J. Physiol. 1989;257:(4Pt. 1):C743–C749. https://doi.org/10.1152/ajpcell.1989.257.4.c743
12. Калиман П.А., Беловецкая И.В. Влияние хлорида кобальта на активность ключевых ферментов метаболизма гема в печени крысы. Биохимия. 1986;51(8):1307–1308.
13. Осинский С., Левитин И., Бубновская Л. Селективность действия редокс-активных комплексов кобальта(III) на опухолевую ткань. Экспериментальная онкология. 2004;26(2):18–24.
14. Izom G.E., Way J.L. Cyanide intoxication: protection with cobaltous chloride. Toxicol. Appl. Pharmacol. 1973;24(3):449–456. https://doi.org/10.1016/0041-008x(73)90051-3
15. Gardner F.H. The use of cobaltous chloride in the anemia associated with chronic renal disease. J. Lab. Clin. Med. 1953;41(1):56–64.
16. Wintrobe M.M., Grinstein M., Dubash J.J., Humphreys S.R., Ashenbrucker H., Worth W. The anemia of infection, VI. The influence of cobalt on the anemia associated with inflammation. Blood. 1947;2(4):323–331. https://doi.org/10.1182/blood.v2.4.323.323
17. Christensen J.M., Poulsen O.M., Thomsen M. A short-term cross-over study on oral administration of soluble and insoluble cobalt compounds: sex differences in biological levels. Int. Arch. Occup. Environ. Health. 1993;65(4):233. https://doi.org/10.1007/bf00381196
18. Edel J., Pozzi G., Sabbioni E., Pietra R., Devos S. Metabolic and toxicological studies on cobalt. Sci. Total Environ. 1994;150(1–3):233–244. https://doi.org/10.1016/0048-9697(94)90159-7
19. Young R.S. Cobalt. In: Frieden E. (Ed.). Biochemistry of the Essential Ultratrace Elements. UK: Springer; 1985;3:133–147. URL: https://link.springer.com/chapter/10.1007/978-1-4684-4775-0_6
20. Taylor A. Detection and monitoring of disorders of essential trace elements. Ann. Clin. Biochem. 1996;33(Pt 6):486–510. https://doi.org/10.1177/000456329603300603
21. Barceloux D.G. Cobalt. J. Toxicol. Clin. Toxicol. 1999;37(2):201–206. https://doi.org/10.1081/clt100102420
22. Cobalt in Hard Metals and Cobalt Sulfate, Gallium Arsenide, Indium Phosphide and Vanadium Pentoxide. IARC Working Group on the Evaluation of Carcinogenic Risks to Humans. Lyon, France: 2006. V. 86. 353 p. URL: http://monographs.iarc.fr/ENG/Monographs/vol86/mono86.pdf (accessed May 12, 2021).
23. Beuck S., Schänzer W., Thevis M. Hypoxia-inducible factor stabilizers and other small-molecule erythropoiesisstimulating agents in current and preventive doping analysis. Drug Test. Analysis. 2012;4(11):830–845. https://doi.org/10.1002/dta.390
24. Ebert B, Jelkmann W. Intolerability of cobalt salt as erythropoietic agent. Drug Test Anal. 2014;6(3):185–189. https://doi.org/10.1002/dta.1528
25. Jelkmann W. The disparate roles of cobalt in erythropoiesis, and doping relevance. Open J. Hematol. 2012;3(1):1–9.
26. Zang Q., Yan Q., Yang H., Wei W. Oxygen sensing and adaptability won the 2019 Nobel Prize in Physiology or medicine. Genes & Diseases. 2019;6(4):328–332. https://doi.org/10.1016/j.gendis.2019.10.006
27. Stolze I.P., Mole D.R., Ratcliffe P.J. Regulation of HIF: prolyl hydroxylases. Novartis Found. Symp. 2006;272:15–25. https://doi.org/10.1002/9780470035009.ch3
28. Epstein A.C., Gleadle J.M., McNeill L.A., Hewitson K.S., O’Rourke J., Mole D.R., Mukherji M., Metzen E., Wilson M.I., Dhanda A., Tian Y.M., Masson N., Hamilton D.L., Jaakkola P., Barstead R., Hodgkin J., Maxwell P.H., Pugh C.W., Schofield C.J., Ratcliffe P.J. C. elegans EGL-9 and mammalian homologs define a family of dioxygenases that regulate HIF by prolyl hydroxylation. Cell. 2001;107(1):43–54. https://doi.org/10.1016/s0092-8674(01)00507-4
29. Коломейцев А.В., Тарарина Л.И., Моргулис И.И. Влияние хлорида кобальта на кроветворение у мышей в ранние сроки после воздействия. Вестник КрасГАУ. 2003;2:101–103.
30. Гончаревская О.А., Монин Ю.Г., Наточин Ю.В. Регуляция скорости проксимальной и дистальной реабсорбции при внутриканальцевом введении кобальта. Физиол. журн. СССР. 1985;71(10):1287–1292.
31. Yamagami K., Nishimura S., Sorimachi M. Cd2+ and Co2+ at micromolar concentrations mobilize intracellular Ca2+ via the generation of inositol 1,4,5-triphosphate in bovine chromaffin cells. Brain Res. 1998;798(1–2):316–319. https://doi.org/10.1016/s0006-8993(98)00445-4
32. Comhaire S., Blust R., Van Ginneken L., Vanderborght, O.L.J. Branchial cobalt uptake in the carp, Cyprinus carpio: effect of calcium channel blockers and calcium injection. Fish Physiol. Biochem. 1998;18(1):1–13. https://doi.org/10.1023/A:1007746117932
33. Goldberg M.A., Imagawa S., Dunning S.P., Bunn H.F. Oxygen sensing and erythropoietin gene regulation. In: Baldamus C.A., Koch K.M., Scigalla P., Wieczorek L. (Eds.). Erythropoietin: From Molecular Structure to Clinical Application; Contrib. Nephrol. Basel: Karger; 1989;76:39–56. https://doi.org/10.1159/000417880
34. Bruick R.K. Oxygen sensing in the hypoxic response pathway: regulation of the hypoxia-inducible transcription factor. Genes Dev. 2003;17(21):2614–2623. https://doi.org/10.1101/gad.1145503
35. Malard V., Berenguer F., Pratt O., Ruat S., Steinmerz G., Quemeneur E. Global gene expression profiling in human lung cells exposed to cobalt. BMS Genomics. 2007;8:147–164. https://doi.org/10.1186/1471-2164-8-147
36. Романова Т.А., Кравченко О.В., Моргулис И.И., Кузубов А.А., Краснов П.О., Аврамов П.В. Подтверждение гипотезы гемопротеинового сенсора ab initio методом квантовой химии. Коорд. химия. 2004;30(6):432–435.
37. Mucklow E.S., Griffin S.J., Delves H.T., Suchak B. Cobalt poisoning in a 6-year-old. Lancet. 1990;335(8695):981. https://doi.org/10.1016/0140-6736(90)91053-d
38. Simonsen L.O., Harbak H., Bennekou P. Cobalt metabolism and toxicology–a brief update. Sci. Total Environ. 2012;432:210–215. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2012.06.009
39. Bradberry S., Sabatta M., Vale J. Cobalt Chloride. UKPID Monograph. URL: www.inchem.org/documents/ukpids/ukpids/ukpid50.htm (accessed May 12, 2021).
40. Finley B.L., Monnot A.D., Paustenbach D.J., Gaffney S.H. Derivation of a chronic oral reference dose for cobalt. Regul. Toxicol. Pharm. 2012;64(3):491–503. https://doi.org/10.1016/j.yrtph.2012.08.022
41. Linna A., Oksa P., Groundstroem K., Halkosaari M., Palmroos P., Huikko S., Uitti J. Exposure to cobalt in the production of cobalt and cobalt compounds and its effect on the heart. Occup. Environ. Med. 2004;61(11):877–885. https://doi.org/10.1136/oem.2003.009605
42. Yuan Y., Hilliard G., Ferguson T., Millhorn D.E. Cobalt inhibits the interaction between hypoxia-inducible factor-alpha and von Hippel-Lindau protein by direct binding to hypoxia-inducible factor-alpha. J. Biol. Chem. 2003;278(18):15911–15916. https://doi.org/10.1074/jbc.m300463200
43. Simonsen L.O., Brown A.M., Harbak H., Kristensen B.I., Bennekou P. Cobalt uptake and binding in human red blood cells. Blood Cell Mol. Dis. 2011;46(4):266–276. https://doi.org/10.1016/j.bcmd.2011.02.009
44. Unice K.M., Monnot A.D., Gaffney S.H., Tvermoes B.E., Thuett K.A., Paustenbach D.J., Finley B.L. Inorganic cobalt supplementation: Prediction of cobalt levels in whole blood and urine using a biokinetic model. Food Chem. Toxicol. 2012;50(7):2456–2461. https://doi.org/10.1016/j.fct.2012.04.00
45. Gray M.J., Zhang J., Ellis L.M., Semenza G.L., Evans D.B., Watowich S.S., Gallick G.E. HIF-1alpha, STAT3, CBP/p300 and Ref-1/APE are components of a transcriptional complex that regulates Src-dependent hypoxia-induced expression of VEGF in pancreatic and prostate carcinomas. Oncogene. 2005;24(19):3110–3120. https://doi.org/10.1038/sj.onc.1208513
46. Singh N.K., Chhabra R., Datta K. Nonenzymatic synthesis of delta-aminolevulinate (ALA) by cobalt (Co++). Biochem. Biophys. Res. Commun. 1987;143(2):439–446. https://doi.org/10.1016/0006-291x(87)91373-8
47. Chai Y.C., Mendes L.F., van Gastel N., Carmeliet G., Luyten F.P. Fine-tuning pro-angiogenic effects of cobalt for simultaneous enhancement of vascular endothelial growth factor secretion and implant neovascularization. Acta Biomater. 2018;72:447–460. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2018.03.048
48. Peters K., Schmidt H., Unger R.E., Kamp G., Pröls F., Berger B.G., Kirkpatrick C.J. Paradoxical effects of hypoxiamimicking divalent cobalt ions in human endothelial cells in vitro. Mol. Cell. Biochem. 2005;270(1–2):157–166. https://doi.org/10.1007/s11010-005-4504-z
49. De Laia A.G.S., Valverde T.M., Barrioni B.R., da Silva Cunha P., de Goes A.M., de Miranda M.C., Gomes D.A., Gueiros-Junior C.M., de Sa M.A., de Magalhães Pereira M. Cobalt-containing bioactive glass mimics vascular endothelial growth factor A and hypoxia inducible factor 1 function. J. Biomed. Mater. Res. A. 2021;109(7):1051–1064. https://doi.org/10.1002/jbm.a.37095
50. Okamoto S., Eltis L.D. The biological occurrence and trafficking of cobalt. Metallomics. 2011;3(10):963–970. https://doi.org/10.1039/c1mt00056j
51. Gluhcheva Y., Pavlova E., Petrova E., Tinkov A.A., Ajsuvakova O.P., Skalnaya M.G., Vladov I., Skalny A.V. The Impact of Perinatal Cobalt Chloride Exposure on Extramedullary Erythropoiesis, Tissue Iron Levels, and Transferrin Receptor Expression in Mice. Biol. Trace Elem. Res. 2020;194(2):423–431. https://doi.org/10.1007/s12011-019-01790-8
52. Xu X., Liu T., Wu J., Wang Y., Hong Y., Zhou H. Transferrin receptor-involved HIF-1 signaling pathway in cervical cancer. Cancer Gene Ther. 2019;26(11–12):356–365. https://doi.org/10.1038/s41417-019-0078-x
53. De Boeck M., Kirsch-Volders M., Lison D. Cobalt and antimony: genotoxicity and carcinogenicity. Mutat. Res. 2003;533(1–2):135–152. https://doi.org/10.1016/j.mrfmmm.2003.07.012
54. Shukla D., Saxena S., Purushothaman J., Shrivastava K., Singh M., Shukla S., Malhotra V.K., Mustoori S., Bansal A. Hypoxic preconditioning with cobalt ameliorates hypobaric hypoxia induced pulmonary edema in rat. Eur. J. Pharmacol. 2011;656(1–3):101–109. https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2011.01.038
55. Saxena S., Shukla D., Bansal A. Augmentation of aerobic respiration and mitochondrial biogenesis in skeletal muscle by hypoxia preconditioning with cobalt chloride. Toxicol. Appl. Pharmacol. 2012;264(3):324–334. https://doi.org/10.1016/j.taap.2012.08.033
56. Suzuki J. Time-course changes in VEGF expression and capillarity in the early stage of exercise training with Co treatment in rat skeletal muscles. Acta Physiol. Scand. 2004;181(2):225–232. https://doi.org/10.1111/j.1365-201x.2004.01279.x
57. Hoffmeister T., Schwenke D., Krug O., Wachsmuth N., Geyer H., Thevis M., Byrnes W.C., Schmidt W.F.J. Effects of 3 Weeks of Oral Low-Dose Cobalt on Hemoglobin Mass and Aerobic Performance. Front. Physiol. 2018;9:1289. https://doi.org/10.3389/fphys.2018.01289
58. da Justa Neves D.B., Caldas E.D. Dietary supplements: International legal framework and adulteration profiles, and characteristics of products on the Brazilian clandestine market. Regul. Toxicol. Pharmacol. 2015;73(1):93–104. https://doi.org/10.1016/j.yrtph.2015.06.013
59. Krug O., Thomas A., Walpurgis K., Piper T., Sigmund G., Schänzer W., Laussmann T., Thevis M. Identification of black market products and potential doping agents in Germany 2010–2013. Eur. J. Clin. Pharmacol. 2014;70(11):1303–1311. https://doi.org/10.1007/s00228-014-1743-5
60. Thevis M., Krug O., Piper T., Geyer H., Schänzer W. Solutions Advertised as Erythropoiesis-stimulating Products were Found to Contain Undeclared Cobalt and Nickel Species. Int. J. Sports Med. 2015;37(1):82–84. https://doi.org/10.1055/s-0035-1569350
61. Geyer H., Braun H., Burke L.M., Stear S.J., Castell L.M. A-Z of nutritional supplements: dietary supplements, sports nutrition foods and ergogenic aids for health and performance-Part 22. Br. J. Sports Med. 2011;45(9):752–754. https://doi.org/10.1136/bjsports-2011-090180
62. Geyer H., Parr M.K., Koehler K., Mareck U., Schänzer W., Thevis M. Nutritional supplements cross-contaminated and faked with doping substances. J. Mass Spectrom. 2008;43(7):892–902. https://doi.org/10.1002/jms.1452
63. Ho E.N.M., Chan G.H.M., Wan T.S.M., Curl P., Riggs C.M., Hurley M.J., Sykes D. Controlling the misuse of cobalt in horses. Drug Test. Anal. 2015;7(1):21–30. https://doi.org/10.1002/dta.1719
64. Hillyer L.L., Ridd Z., Fenwick S., Hincks P., Paine S.W. Pharmacokinetics of inorganic cobalt and a vitamin B12 supplement in the Thoroughbred horse: Differentiating cobalt abuse from supplementation. Equine Vet. J. 2018;50(3):343–349. https://doi.org/10.1111/evj.12774
65. Calbet J.A., Lundby C., Koskolou M., Boushel R. Importance of hemoglobin concentration to exercise: acute manipulations. Respir. Physiol. Neurobiol. 2006;151(2–3):132–140. https://doi.org/10.1016/j.resp.2006.01.014
66. Reichel C., Gmeiner G. Erythropoietin and analogs. In: Thieme D., Hemmersbach P. (Eds.). Doping in Sports: Biochemical Principles, Effects and Analysis. Handbook of Experimental Pharmacology. Berlin, Heidelberg: Springer; 2010;195:251–294. https://doi.org/10.1007/978-3-540-79088-4_12
67. Okano M., Sato M., Kaneko E., Kageyama S. Doping control of biosimilar epoetin kappa and other recombinant erythropoietins after intravenous application. Drug Test. Anal. 2011;3(11–12):798–805. https://doi.org/10.1002/dta.369
68. Rodriguez-Jimenez F.J., Moreno-Manzano V. Modulation of hypoxia-inducible factors (HIF) from an integrative pharmacological perspective. Cell. Mol. Life Sci. 2012;69(4):519–534. https://doi.org/10.1007/s00018-011-0813-4
69. Jelkmann W. Efficacy of recombinant erythropoietins: is there unity of international units? Nephrol. Dial. Transpl. 2009;24(5):1366–1368. https://doi.org/10.1093/ndt/gfp058
70. Jefferson J.A., Escudero E., Hurtado M.E., Pando J., Tapia R., Swenson E. R., Prchal J., Schreiner G.F., Schoene R.B., Hurtado A., Johnson R.J. Excessive erythrocytosis, chronic mountain sickness, and serum cobalt levels. Lancet. 2002;359(9304):407–408. https://doi.org/10.1016/s0140-6736(02)07594-3
71. Jansen H.M., Knollema S., van der Duin L.V., Willemsen A.T., Wiersma A., Franssen E.J., Russel F.G., Korf J., Paans A.M. Pharmacokinetics and dosimetry of cobalt-55 and cobalt-57. J. Nucl. Med. 1996;37(12):2082–2086.
72. Ebert B., Jelkmann W. Intolerability of cobalt salt as erythropoietic agent. Drug Test Anal. 2014;6(3):185–189. https://doi.org/10.1002/dta.1528
73. Weißbecker L. Die Kobalttherapie. Deutsch. Med. Wochenschr. 1950;75:116–118.
74. Weissbecker L. Neue Möglichkeiten der Kobalttherapie. Klin.Wochenschr. 1951;29:80–82. https://doi.org/10.1007/BF01480495
75. Curtis J.R., Goode G.C., Herrington J., Urdaneta L.E. Possible cobalt toxicity in maintenance hemodialysis patients after treatment with cobaltous chloride: a study of blood and tissue cobalt concentrations in normal subjects and patients with terminal and renal failure. Clin. Nephrol. 1976;5(2):61–65.
76. Schirrmacher U.O. Case of cobalt poisoning. Brit. Med. J. 1967;1(5539):544–545. https://doi.org/10.1136/bmj.1.5539.544
77. Licht A., Oliver M., Rachmilewitz E.A. Optic atrophy following treatment with cobalt chloride in a patient with pancytopenia and hypercellular marrow. Isr. J. Med. Sci. 1972;8(1):61–66.
78. Kriss J. P., Carnes W. H., Gross R. T. Hypothyroidism and thyroid hyperplasia in patients treated with cobalt. J. Am. Med. Assoc. 1955;157(2):117–121. https://doi.org/10.1001/jama.1955.02950190017004
79. Jacobziner H., Raybin H.W. Poison control... accidental cobalt poisoning. Arch. Pediatr. 1961;78:200–205.
80. Lison D., De Boeck M., Verougstraete V., KirschVolders M. Update on the genotoxicity and carcinogenicity of cobalt compounds. Occup Environ Med. 2001;58(10):619–625. https://doi.org/10.1136/oem.58.10.619
81. Pulido M.D., Parrish A.R. Metal-induced apoptosis: mechanisms. Mutat Res. 2003;533(1–2):227–241. https://doi.org/10.1016/j.mrfmmm.2003.07.015
82. Aggarwal S.K., Kinter M., Herold D.A. Determination of cobalt in urine by gas chromatography-mass spectrometry employing nickel as an internal standard. J. Chromatogr. B. 1992;576(2):297–304. https://doi.org/10.1016/0378-4347(92)80203-3
83. Minakata K., Suzuki M., Suzuki O. Application of electrospray ionization tandem mass spectrometry for the rapid and sensitive determination of cobalt in urine. Anal. Chim. Acta 2008;614(2):161–164. https://doi.org/10.1016/j.aca.2008.03.043
84. Todorovska N., Karadjova I., Arpadjan S., Stafilov T. Electrothermal atomic absorption spectrometric-determination of cobalt in human serum and urine. Acta Pharm. 2003;53(2):83–90.
85. Sarmiento-Gonzalez A., Marchante-Gayon J.M., Tejerina-Lobo J.M., Paz-Jimenez J., Sanz-Medel A. Highresolution ICP-MS determination of Ti, V, Cr, Co, Ni, and Mo in human blood and urine of patients implanted with a hip or knee prosthesis. Anal. Bioanal. Chem. 2008;391(1):2583–2589. https://doi.org/10.1007/s00216-008-2188-4
86. Popot M.-A., Ho E.N.M., Stojiljkovic N., Bagilet F., Remy P., Maciejewski P., Loup B., Chan G.H.M., Hargrave S., Arthur R.M., Russo C., White J., Hincks P., Pearce C., Ganio G., Zahra P., Batty D, Jarrett M., Brooks L., Prescott L.-A., BaillyChouriberry L., Bonnaire Y. and Wan T.S.M. Interlaboratory trial for the measurement of total cobalt in equine urine and plasma by ICP-MS. Drug Test Anal. 2017;9(9):1400–1406. https://doi.org/10.1002/dta.2191
87. Knoop A., Planitz P., Wüst B., Thevis M. Analysis of cobalt for human sports drug testing purposes using ICPand LC-ICP-MS. Drug Test Anal. 2020;12(11–12):1666–1672. https://doi.org/10.1002/dta.2962
88. Galay E.Ph., Dorogin R.V., Temerdashev A.Z. Quantification of cobalt and nickel in urine using inductively coupled plasma atomic emission spectroscopy. Heliyon. 2021;7(1):e06046. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2021.e06046
Дополнительные файлы
|
1. Действие HIF при нормальном парциальном давлении кислорода – нормоксия в клетке и при кислородной недостаточности – гипоксия (аналогично действию препаратов кобальта). | |
Тема | ||
Тип | Исследовательские инструменты | |
Посмотреть
(1MB)
|
Метаданные ▾ |
|
2. This is to certify that the paper titled Biological functions of cobalt and its toxicology and detection in anti-doping control commissioned to us by Irina V. Pronina, Elena S. Mochalova, Yuliya A. Efimova, Pavel V. Postnikov has been edited for English language and spelling by Enago, an editing brand of Crimson Interactive Inc. | |
Тема | CERTIFICATE OF EDITING | |
Тип | Прочее | |
Посмотреть
(732KB)
|
Метаданные ▾ |
- Впервые представлен обзор литературных данных по использованию солей кобальта в качестве стимуляторов кроветворения и их применению в качестве допинга. Они заявлены в Запрещенном списке ВАДА.
- Лишь единичные лаборатории антидопингового контроля вводят в свою методологическую базу регламентированные подходы по определению данного вида допинга.
- Обобщены и систематизированы основные методы идентификации кобальта как допингового агента.
- Сделан вывод о несомненном преимуществе метода высокоэффективной жидкостной хроматографии в сочетании с масс-спектрометрией с индуктивно-связанной плазмой (HPLC-ICP-MS), позволяющий отличить эндогенный кобальт, входящий в состав цианокобаламина – витамина В12, от запрещенного к применению неорганического кобальта.
Рецензия
Для цитирования:
Пронина И.В., Мочалова Е.С., Ефимова Ю.А., Постников П.В. Биологические функции кобальта, токсикология и обнаружение в антидопинговом контроле. Тонкие химические технологии. 2021;16(4):318-336. https://doi.org/10.32362/2410-6593-2021-16-4-318-336
For citation:
Pronina I.V., Mochalova E.S., Efimova Yu.A., Postnikov P.V. Biological functions of cobalt and its toxicology and detection in anti-doping control. Fine Chemical Technologies. 2021;16(4):318-336. https://doi.org/10.32362/2410-6593-2021-16-4-318-336