Preview

Тонкие химические технологии

Расширенный поиск

Получение рекомбинантных нейротрофинов человека для биомедицинских исследований

Аннотация

Клонированы гены фактора роста нервов (NGF), нейротрофического фактора головного мозга (BDNF) и нейротрофического фактора 3 (NT-3) человека и осуществлена их экспрессия в клетках Escherichia coli. Разработаны схемы очистки и ренатурации соответствующих пробелков. Продемонстрировано, что рекомбинантные про-NGF, про-BDNF, про-NT-3 оказывают дифференцирующее действие на культуру спинномозговых ганглиев эмбрионов кур.

Об авторах

Л. М. Рафиева
Институт молекулярной генетики РАН
Россия
Лаборатория Белковой инженерии, младший научный сотрудник


Д. Р. Сафина
МИТХТ им. М.В. Ломоносова, 119571, Москва, пр-т Вернадского, д. 86
Россия
кафедра Биотехнологии и бионанотехнологии, ассистент, научный сотрудник


И. В. Демидюк
МИТХТ им. М.В. Ломоносова, 119571, Москва, пр-т Вернадского, д. 86
Россия
кафедра Биотехнологии и бионанотехнологии, доцент, старший научный сотрудник


С. В. Костров
МИТХТ им. М.В. Ломоносова, 119571, Москва, пр-т Вернадского, д. 86
Россия
кафедра Биотехнологии и бионанотехнологии, профессор, директор института


Список литературы

1. Segal R.A. Selectivity in neurotrophin signaling: Theme and variations // Annu. Rev. Neurosci. 2003. V. 26. P. 299-330.

2. Pedraza S.E., Podlesniy P., Vidal N., Arévalo J.C., Lee R., Hempstead B., Ferrer I., Iglesias M., Espinet C. Pro-NGF isolated from the human brain affected by Alzheimer's disease induces neuronal apoptosis mediated by p75NTR / // Am. J. Pathol. 2005. V. 166. № 2. P. 533-543.

3. Nordell V.L., Lewis D.K., Bake S., Sohrabji F. The neurotrophin receptor p75NTR mediates early anti-inflammatory effects of estrogen in the forebrain of young adult rats // BMC Neurosci. 2005. V. 6. P. 58. URL: <http://www.biomedcentral.com/1471-2202/6/58>

4. McDonald N.Q., Chao M.V. Structural determinants of neurotrophin action // J. Biol.Chem. 1995. V. 270. P. 19669-19672.

5. Reichardt L.F. Neurotrophin-regulated signalling pathways // Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 2006. V. 361. № 1473. P. 1545-1564.

6. Arévalo J.C., Wu S.H. Neurotrophin signaling: Many exciting surprises! // Cell Mol. Life Sci. 2006. V. 63. № 13. P. 1523-1537.

7. Jones K.R. Reichardt L.F. Molecular cloning of human gene that is member of nerve growth factor family // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. V. 87. № 20. P. 8060-8064.

8. McDonald, N.Q., Hendrickson W.A. A structural superfamily of growth factors containing a cystine knot motif // Cell. 1993. V. 73. № 3. P. 421-424.

9. Lessmann V., Gottmann K., Malcangio M. Neurotrophin secretion: current facts and future prospects // Prog. Neurobiol. 2003. Vol. 69. № 5. P. 341-374.

10. Rattenholl A., Lilie H., Grossmann A., Stern A., Schwarz E., Rudolph R. The pro-sequence facilitates folding of human nerve growth factor from Escherichia coli inclusion bodies // Eur. J. Biochem. 2001. V. 268. № 11. P. 3296-3303.

11. Rattenholl A., Ruoppolo M., Flagiello A., Monti M., Vinci F., Marino G., Lilie H., Schwarz E., Rudolph R. Pro-sequence assisted folding and disulfide bond formation of human nerve growth factor // J. Mol. Biol. 2001. V. 305. № 3. P. 523-533.

12. Schweigreiter R. The dual nature of neurotrophins // Bioessays. 2006. V. 28. № 6. P. 583-594.

13. Paoletti F., Konarev P.V., Covaceuszach S., Schwarz E., Cattaneo A., Lamba D., Svergun D.I. Structural and functional properties of mouse proNGF // Biochem. Soc. Trans. 2006. V. 34. № 4. P. 605-606.

14. Fahnestock M., Michalski B., Xu B., Coughlin M.D. The precursor pro-nerve growth factor is the predominant form of nerve growth factor in brain and is increased in Alzheimer's disease // Mol. Cell. Neurosci. 2001. V. 18. № 2. P. 210-220.

15. Lee R., Kermani P., Teng K.K., Hempstead B.L. Regulation of cell survival by secreted proneurotrophins // Science. 2001. V. 294. № 5548. P. 1945-1948.

16. Teng H.K., Teng K.K., Lee R. [et al.]. ProBDNF induces neuronal apoptosis via activation of a receptor complex of p75NTR and sortilin // J. Neurosci. 2005. Vol. 25. № 22. P. 5455-5463.

17. Pagadala P.C., Dvorak L.A., Neet K.E. Construction of a mutated pro-nerve growth factor, resistant to degradation and suitable for biophysical and cellular utilization // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2006. V. 103. № 47. P. 17939-17943.

18. Kliemannel M., Rattenholl A., Golbik R., Balbach J., Lilie H., Rudolph R., Schwarz E. The mature part of proNGF induces the structure of its pro-peptide // FEBS Lett. 2004. V. 566. № 1-3. P. 207-212.

19. Volosin M., Trotter C., Cragnolini A., Kenchappa R.S., Light M., Hempstead B.L., Carter B.D., Friedman W.J. Induction of proneurotrophins and activation of p75NTR-mediated apoptosis via Neurotrophin Receptor Interacting Factor (NRIF) in hippocampal neurons after seizures / J. Neurosci. 2008. V. 28. № 39. P. 9870-9879.

20. Edwards R.H., Selby M.J., Garcia P.D., Rutter W.J. Processing of the native nerve growth factor precursor to form biologically active nerve growth factor // J. Biol. Chem. 1988. V. 263. № 14. P. 6810-6815.

21. Yano H., Torkin R., Martin L.A., Chao M.V., Teng K.K. Proneurotrophin-3 is a neuronal apoptotic ligand: Evidence for retrograde-directed cell killing // J. Neurosci. 2009. V. 29. № 47. P. 14790-14802.

22. Koshimizu H., Kiyosue K., Hara T. [et al.]. Multiple functions of precursor BDNF to CNS neurons: negative regulation of neurite growth, spine formation and cell survival // Mol. Brain. 2009. V. 2. P. 27. URL: <http://www.molecularbrain.com/content/2/1/27>

23. Zhang D., Bernd P. Bernd expression of TRK and neurotrophin mRNA in dorsal root and sympathetic of the quail during development // J. Neurobiol. 1994. V. 25. № 12. P. 1517-1532.

24. Young L., Bisland J., Harper S. A rapid method for determination of cell survival in primary neuronal DRG cultures // J. Neurosci. Methods. 1999. V. 93. № 1. P. 81-89.

25. Greene L.A. Quantitative in vitro studies on the nerve growth factor (NGF) requirement of neurons. II. Sensory neurons // Dev. Biol. 1977. V. 58. № 1. P. 106-113.

26. Rosenthal A., Goeddel D., Winslow W. Primary structure and biological activity of a novel human neurotropthic factor // Neuron. 1990. V. 4. № 5. P. 767-773.

27. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head bacteriophage T4 // Nature. 1970. V. 227. № 5259. P. 680-685.

28. McCarthy K., Partlow L. Preparation of pure neuronal and non-neuronal cultures from embryonic chick sympathetic ganglia a new method based on both differential cell adhesiveness and the formation of homotypic neuronal aggregates // Brain Res. 1976. V. 114. № 3. P. 391-414.

29. Davies A. Neurotrophic factor bioassay using dissociated neurons // In: Nerve growth factors / Ed. R.A. Rush. - New York: John Wiley and Sons, 1989. Chapt. 5. P. 95-109.


Рецензия

Для цитирования:


Рафиева Л.М., Сафина Д.Р., Демидюк И.В., Костров С.В. Получение рекомбинантных нейротрофинов человека для биомедицинских исследований. Тонкие химические технологии. 2011;6(2):51-57.

For citation:


Rafieva L.M., Safina D.R., Demidyuk I.V., Kostrov S.V. Production of human recombinant neurotrophins for biomedical studies. Fine Chemical Technologies. 2011;6(2):51-57. (In Russ.)

Просмотров: 336


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 International License.


ISSN 2410-6593 (Print)
ISSN 2686-7575 (Online)