Бифункциональные хелаторы к катиону галлия
https://doi.org/10.32362/2410-6593-2022-17-2-107-130
Аннотация
Цели. Химия радионуклидов 67Ga и 68Ga играет одну из ключевых ролей в ядерной медицине для применения в радиофармпрепаратах, в частности, в неинвазивных методах молекулярной визуализации in vivo. Использование радиометаллов для мечения биомолекул обычно требует использования бифункциональных хелаторов, которые, кроме полидентатного фрагмента, координирующего металл, содержат функциональную группу для ковалентного связывания с вектором-мишенью. Цели данного обзора – проанализировать накопленный к настоящему времени экспериментальный материал, касающийся разработки и применения в медицинских исследованиях бифункциональных хелаторов к катиону галлия, а также выявить и проанализировать основные требования, предъявляемые к структуре хелатора и его комплексов с 68Ga, необходимые для создания эффективных фармакологических препаратов на его основе.
Результаты. Рассмотрены макроциклические бифункциональные хелаторы, образующие стабильные in vivo комплексы с 68Ga, а также ациклические хелаторы, преимущество которых заключается в более быстрой кинетике комплексообразования, что является ключевым фактором, учитывающим короткий период полураспада 68Ga. Проведена оценка достоинств и недостатков обоих типов лигандов. Кроме того, осуществлен критический анализ констант связывания и условий образования комплексов. Рассмотрены примеры влияния природы металлического комплекса (геометрия, липофильность, общий заряд) на биораспределение целевых радиофармацевтических препаратов.
Выводы. Несмотря на достигнутые успехи в рассмотренных направлениях создания бифунциональных хелаторов, по-прежнему важной остается проблема корреляции химической структуры радиофармпрепаратов на основе металлов с их поведением in vivo. В этом отношении сравнительные исследования препаратов, имеющих идентичный вектор нацеливания, но включающих разные бифункциональные хелатируюшие агенты, могут помочь в дальнейшем выявлении влияния металл-хелатного фрагмента на фармакокинетику. В целом можно отметить, что для создания эффективного бифункционального хелатирующего агента нужно принимать во внимание целую совокупность факторов, включающую стабильность и инертность хелатора и его комплексов в физиологических условиях, липофильность, кинетику комплексообразования, селективность хеланирования, комбинаторность базовой структуры, а также экономические аспекты: доступность сырья, сложность схемы синтеза.
Об авторах
А. Г. ПоливановаРоссия
Поливанова Анна Геннадьевна, к.х.н., доцент кафедры химии и технологии биомедицинских препаратов
125047, Москва, Миусская площадь, д. 9
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов
И. Н. Соловьёва
Россия
Соловьёва Инна Николаевна, к.х.н., доцент кафедры химии и технологии биомедицинских препаратов
125047, Москва, Миусская площадь, д. 9
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов
Д. О. Ботев
Россия
Ботев Дмитрий Олегович, магистрант, кафедра химии и технологии биомедицинских препаратов
125047, Москва, Миусская площадь, д. 9
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов
Д. Ю. Юрьев
Россия
Юрьев Данил Юрьевич, магистрант, ведущий инженер, кафедра химии и технологии биомедицинских препаратов
125047, Москва, Миусская площадь, д. 9
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов
А. Н. Мыльникова
Россия
Мыльникова Алёна Николаевна, ведущий инженер, ассистент, кафедра химии и технологии биомедицинских препаратов
125047, Москва, Миусская площадь, д. 9
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов
М. С. Ощепков
Россия
Ощепков Максим Сергеевич, д.х.н., заведующий кафедрой химии и технологии биомедицинских препаратов
Scopus Author ID 50262866400; Researcher ID AAA-6443-2022
125047, Москва, Миусская площадь, д. 9
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов
Список литературы
1. Bartholomä M. Recent developments in the design of bifunctional chelators for metal-based radiopharmaceuticals used in Positron Emission Tomography. Inorganica Chim. Acta. 2012;389:36–51. https://doi.org/10.1016/j.ica.2012.01.061
2. Clarke E.T., Martell A.E. Stabilities of trivalent metal ion complexes of the tetraacetate derivatives of 12-, 13- and 14-membered tetraazamacrocycles. Inorganica Chim. Acta. 1991;190(1):37–46. https://doi.org/10.1016/S0020-1693(00)80229-7
3. Clarke E.T., Martell A.E. Stabilities of the Fe(III), Ga(III) and In(III) chelates of N,N′,N″-triazacyclononanetriacetic acid. Inorganica Chim. Acta. 1991;181(2):273–280. https://doi.org/10.1016/S0020-1693(00)86821-8
4. Velikyan I., Beyer G.J., Bergstrom-Pettermann E. The importance of high specific radioactivity in the performance of 68Ga-labeled peptide. Nucl. Med. Biol. 2008;35(5):529–536. https://doi.org/10.1016/j.nucmedbio.2008.03.002
5. Riss P.J., et al. NODAPA-OH and NODAPA-(NCS)n: Synthesis, 68Ga-radiolabelling and in vitro characterisation of novel versatile bifunctional chelators for molecular imaging. Bioorg. Med. Chem. Lett. 2008;18(2):5364–5367. https://doi.org/10.1016/j.bmcl.2008.09.054
6. Notni J., Hermann P., Havlíčková J., et al. A Triazacyclononane-Based Bifunctional Phosphinate Ligand for the Preparation of Multimeric 68Ga Tracers for Positron Emission Tomography. Chem. Eur. J. 2010;16(24):7174–7185. https://doi.org/10.1002/chem.200903281
7. Simeček J., et al. A monoreactive bifunctional triazacyclononane phosphinate chelator with high selectivity for gallium-68. ChemMedChem. 2012;8(7):1375–1378. https://doi.org/10.1002/cmdc.201200261
8. Prata M.I.M., et al. Gallium(III) chelates of mixed phosphonate-carboxylate triazamacrocyclic ligands relevant to nuclear medicine: Structural, stability and in vivo studies. J. Inorg. Biochem. 2017;177:8–16. https://doi.org/10.1016/j.jinorgbio.2017.08.015
9. Yang C.-T., Sreerama S.G., Hsieh W.-Y. Synthesis and Characterization of a Novel Macrocyclic Chelator with 3-Hydroxy-4-Pyrone Chelating Arms and Its Complexes with Medicinally Important Metals. Inorg. Chem. 2008;47(7):2719–2727. https://doi.org/10.1021/ic7022506
10. Seemann J., Waldron B.P., Roesch F. Approaching ‘Kit-Type’ Labelling with 68Ga: The DATA Chelators. ChemMedChem. 2015;10(6):1019–1026. https://doi.org/10.1002/cmdc.201500092
11. Ma M.T., Neels O.C., Denoyer D., Roselt P., et al. Gallium-68 Complex of a Macrobicyclic Cage Amine Chelator Tethered to Two Integrin-Targeting Peptides for Diagnostic Tumor Imaging. Bioconjugate Chem. 2011;22(10):2093–2103. https://doi.org/10.1021/bc200319q
12. Boros E., et al. Acyclic chelate with ideal properties for 68Ga PET imaging agent elaboration. J. Am. Chem. Soc. 2010;132(44):15726–15733. https://doi.org/10.1021/ja106399h
13. Sun Y., et al. Indium(III) and gallium(III) complexes of bis(aminoethanethiol) ligands with different denticities: stabilities, molecular modeling, and in vivo behavior. J. Med. Chem. 1996;39(2):458–470. https://doi.org/10.1021/jm9505977
14. Eder M., Krivoshein A.V., Backer M., Backer J.M. ScVEGF-PEG-HBED-CC and scVEGF-PEG-NOTA conjugates: comparison of easy-to-label recombinant proteins for [68Ga]PET imaging of VEGF receptors in angiogenic vasculature. Nucl. Med. Biol. 2010;37(4):405–412. https://doi.org/10.1016/j.nucmedbio.2010.02.001
15. Liolios C., et al. Synthesis, characterization and evaluation of 68Ga labelled monomeric and dimeric quinazoline derivatives of the HBED-CC chelator targeting the epidermal growth factor receptor. Bioorg. Chem. 2020;100:103855. https://doi.org/10.1016/j.bioorg.2020.103855
16. Timerbaev A.R. Advances in developing tris(8-quinolinolato)gallium(III) as an anticancer drug: critical appraisal and prospects. Metallomics. 2009;1(3):193–198. https://doi.org/10.1039/b902861g
17. Enyedy É.A., Mészáros J.P., Spengler G., Hanif M. Comparative solution studies and cytotoxicity of gallium(III) and iron(III) complexes of 3-hydroxy-2(1H)-pyridinones. Polyhedron. 2019;172:141–147. https://doi.org/10.1016/j.poly.2019.04.010
18. Berry D.J., Ma Y., Ballinger J.R., Tavaré R. Efficient bifunctional gallium-68 chelators for positron emission tomography: tris(hydroxypyridinone) ligands. ChemComm. 2011;47(25):7068. https://doi.org/10.1039/C1CC12123E
19. Chaves S., Marques S.M., Matos A.M.F., Nunes A. New Tris(hydroxypyridinones) as Iron and Aluminium Sequestering Agents: Synthesis, Complexation and in Vivo Studies. Chem. Eur. J. 201;16(34):10535–10545. https://doi.org/10.1002/chem.201001335
20. Mathias C.J., Lewis M.R., Reichert D.E., Laforest R., et al. Preparation of 66Ga- and 68Ga-labeled Ga(III)-deferoxaminefolate as potential folate-receptor-targeted PET radiopharmaceuticals. Nucl. Med. Biol. 2003;30(7):725–731. https://doi.org/10.1016/s0969-8051(03)00080-5
21. Vosjan M.J.W.D., Perk L.R., Roovers R.C., Visser G.W.M., et al. Facile labelling of an anti-epidermal growth factor receptor Nanobody with 68Ga via a novel bifunctional desferal chelate for immuno-PET. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2011;38(4):753–763. https://doi.org/10.1007/s00259-010-1700-1
22. Fani M., et al. PET of somatostatin receptor-positive tumors using 64Cu- and 68Ga-somatostatin antagonists: the chelate makes the difference. J. Nuc.l Med. 2011;52(7):1110–1118. https://doi.org/10.2967/jnumed.111.087999
23. Martell A.E., Motekaitis R.J., Clarke E.T., Delgado R., et al. Stability constants of metal complexes of macrocyclic ligands with pendant donor groups. Supramol. Chem. 1996;6(3–4):353–363. https://doi.org/10.1080/10610279608032555
24. Ma R., Welch M.J., Reibenspies J. Stability of metal ion complexes of 1,4,7-tris(2-mercaptoethyl)-1,4,7- triazacylclonane (TACN-TM) and molecular structure of In(C12H24N3S3). Inorg. Chim. Acta. 1995;236(1–2):75–82. https://doi.org/10.1016/0020-1693(95)04617-I
25. Craig A.S., Parker D., Adams H. Stability, 71Ga NMR, and crystal structure of a neutral gallium(III) complex of 1,4,7-triazacyclononanetriacetate: a potential radiopharmaceutical? J. Chem. Soc., Chem. commun. 1989;(23):1793–1794. https://doi.org/10.1039/C39890001793
26. Broan C.J., Cox J.P.L., Craig A.S., Kataky R., et al. Structure and solution stability of indium and gallium complexes of 1,4,7-triazacyclononanetriacetate and of yttrium complexes of 1,4,7,10-tetraazacyclododecanetetraacetate and related ligands: kinetically stable complexes for use in imaging and radioimmunotherapy. X-Ray molecular structure of the indium and gallium complexes of 1,4,7-triazacyclononane- 1,4,7-triacetic acid. J. Chem. Soc., Perkin Trans.2. 1991;2(1):87–99. https://doi.org/10.1039/P29910000087
27. Kruper W.J., Rudolf P.R., Langhoff C.A. Unexpected selectivity in the alkylation of polyazamacrocycles. J. Org. Chem. 1993;58(15):3869–3876. https://doi.org/10.1021/jo00067a018
28. Chappell L.L., Rogers B.E., Khazaeli M.B., Mayo M.S. Improved synthesis of the bifunctional chelating agent 1,4,7,10-tetraaza- N -(1-carboxy-3-(4-nitrophenyl)propyl)- N′, N″, N‴- tris(acetic acid)cyclododecane (PA-DOTA). Bioorg. Med. Chem. 1999;7(11):2313–2320. https://doi.org/10.1016/s0968-0896(99)00171-6
29. Prata M.I.M., Santos A.C., Geraldes C.F.G.C. Characterisation of 67Ga3+ complexes of triaza macrocyclic ligands: biodistribution and clearance studies. Nucl. Med. Biol. 1999;26(6):707–710. https://doi.org/10.1016/s0969-8051(99)00041-4
30. Heppeler A., Froidevaux S., Mäcke H.R., Jermann E., et al. Radiometal-Labelled Macrocyclic Chelator-Derivatised Somatostatin Analogue with Superb Tumour-Targeting Properties and Potential for Receptor-Mediated Internal Radiotherapy. Chem. Eur. J. 1999;5(7):1974–1981. https://doi.org/10.1002/(SICI)1521-3765(19990702)5:7%3C1974::AIDCHEM1974%3E3.0.CO;2-X
31. Viola N.A., Rarig R.S., Ouellette W., Doyle R.P. Synthesis, structure and thermal analysis of the gallium complex of 1,4,7,10-tetraazacyclo-dodecane-N,N′,N″,N‴-tetraacetic acid (DOTA). Polyhedron. 2006;25(18):3457–3462. https://doi.org/10.1016/j.poly.2006.06.039
32. Velikyan I., Beyer G.J., Långström B. Microwave-Supported Preparation of 68Ga Bioconjugates with High Specific Radioactivity. Bioconjugate Chem. 2004;15(3):554–560. https://doi.org/10.1021/bc030078f
33. Decristoforo C., Hernandez Gonzalez I., Carlsen J., Rupprich M., et al. 68Ga- and IIIIn-labelled DOTA-RGD peptides for imaging of αvβ3 integrin expression. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2008;35(8):1507–1515. https://doi.org/10.1007/s00259-008-0757-6
34. Griffiths G.L., et al. Reagents and methods for PET using bispecific antibody pretargeting and 68Ga-radiolabeled bivalent hapten-peptide-chelate conjugates. J. Nucl. Med. 2004;45(1):30–39.
35. Sneddon D., Cornelissen B. Emerging chelators for nuclear imaging. Curr. Opin. Chem. Biol. 2021;63:152–162. https://doi.org/10.1016/j.cbpa.2021.03.001
36. Al-Nahhas A., et al. Gallium-68 PET: a new frontier in receptor cancer imaging. Anticancer Res. 2007;27(6B):4087–4094.
37. AL-Nahhas A., Win Z., Szyszko T., Singh A. What can gallium-68 PET add to receptor and molecular imaging? Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2007;34(12):1897–1901. https://doi.org/10.1007/s00259-007-0568-1
38. Velikyan I., Maecke H., Langstrom B. Convenient preparation of 68Ga-based PET-radiopharmaceuticals at room temperature. Bioconjugate Chem. 2008;19(2):569–573. https://doi.org/10.1021/bc700341x
39. André J. P., Maecke H. R., Zehnder M., Macko L. 1,4,7-Triazacyclononane-1-succinic acid-4,7-diacetic acid (NODASA): a new bifunctional chelator for radio galliumlabelling of biomolecules. Chem. Commun. 1998;(12):1301–1302. https://doi.org/10.1039/A801294F
40. André J.P., Mäcke H., Kaspar A., Künnecke B. In vivo and in vitro 27Al NMR studies of aluminum(III) chelates of triazacyclononane polycarboxylate ligands. J. Inorg. Biochem. 2002;88(1):1–6. https://doi.org/10.1016/s0162-0134(01)00340-3
41. Eisenwiener K.-P., et al. NODAGATOC, a new chelator-coupled somatostatin analogue labeled with [67/68Ga] and [IIIIn] for SPECT, PET, and targeted therapeutic applications of somatostatin receptor (hsst2) expressing tumors. Bioconjugate Chem. 2002;13(3):530–541. https://doi.org/10.1021/bc010074f
42. Jeong J.M., et al. Preparation of a promising angiogenesis PET imaging agent: 68Ga-labeled c(RGDyK)-isothiocyanatobenzyl- 1,4,7-triazacyclononane-1,4,7-triacetic acid and feasibility studies in mice. J. Nucl. Med. 2008;49(5):830–836. https://doi.org/10.2967/jnumed.107.047423
43. Waldron B.P., Parker D., Burchardt C., Yufit D.S. Structure and stability of hexadentate complexes of ligands based on AAZTA for efficient PET labelling with gallium-68. Chem. Commun. 2017;49(6):579–581. https://doi.org/10.1039/C2CC37544C
44. Parker D., Waldron B.P. Conformational analysis and synthetic approaches to polydentate perhydro-diazepine ligands for the complexation of gallium(III). Org. Biomol. Chem. 2013;11(17):2827. https://doi.org/10.1039/C3OB40287H
45. Costa J., Delgado R. Metal complexes of macrocyclic ligands containing pyridine. Inorg. Chem. 1993;32(23):5257–5265. https://doi.org/10.1021/ic00075a052
46. Ferreira C.L., Lamsa E., Woods M., Duan Y. Evaluation of Bifunctional Chelates for the Development of Gallium-Based Radiopharmaceuticals. Bioconjugate Chem. 2010;21(3):531–536. https://doi.org/10.1021/bc900443a
47. Liu S., Edwards D.S. Bifunctional chelators for therapeutic lanthanide radiopharmaceuticals. Bioconjugate Chem. 2001;12(1):7–34. https://doi.org/10.1021/bc000070v
48. Moreau J., Guillon E., Pierrard J.-C., Rimbault J. Complexing Mechanism of the Lanthanide Cations Eu3+, Gd3+, and Tb3+ with 1,4,7,10-Tetrakis(carboxymethyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecane (dota)—Characterization of Three Successive Complexing Phases: Study of the Thermodynamic and Structural Properties of the Complexes by Potentiometry, Luminescence Spectroscopy, and EXAFS. Chem. Eur. J. 2004;10(20):5218–5232. https://doi.org/10.1002/chem.200400006
49. Eder M., et al. Tetrafluorophenolate of HBED-CC: a versatile conjugation agent for 68Ga-labeled small recombinant antibodies. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2008;35(10):1878–1886. https://doi.org/10.1007/s00259-008-0816-z
50. Collery P., Lechenault F., Cazabat A. Juvin E., et al. Inhibitory effects of gallium chloride and tris (8-quinolinolato) gallium(III) on A549 human malignant cell line. Anticancer Res. 2000;20(2A):955–8.
51. Lessa J.A., Parrilha G.L., Beraldo H. Gallium complexes as new promising metallodrug candidates. Inorg. Chim. Acta. 2012;393:53–63. https://doi.org/10.1016/j.ica.2012.06.003
52. Litecká M., Hreusová M., Kašpárková J., Gyepes R., et al. Low-dimensional compounds containing bioactive ligands. Part XIV: High selective antiproliferative activity of tris(5-chloro-8-quinolinolato)gallium(III) complex against human cancer cell lines. Bioorg. Med. Chem Lett. 2020;30(13):127206. https://doi.org/10.1016/j.bmcl.2020.127206
53. Gómez-Ruiz S., Ceballos-Torres J., Prashar S., Fajardo M. One ligand different metal complexes: Biological studies of titanium(IV), tin(IV) and gallium(III) derivatives with the 2,6-dimethoxypyridine-3-carboxylato ligand. J. Organometallic Chem. 2011;696(20):3206–3213. https://doi.org/10.1016/j.jorganchem.2011.06.036
54. Chaves S., Marques S. M., Matos A. M. F., Nunes A., et al. New Tris(hydroxypyridinones) as Iron and Aluminium Sequestering Agents: Synthesis, Complexation and in Vivo Studies. Chem. Eur. J. 2010;16(34):10535–10545. https://doi.org/10.1002/chem.201001335
55. Chaves S., Mendonça A.C., Marques S.M., Prata M.I. A gallium complex with a new tripodal tris-hydroxypyridinone for potential nuclear diagnostic imaging: solution and in vivo studies of 67Ga-labeled species. J. Inorg. Biochem. 2011;105(1):31–38. https://doi.org/10.1016/j.jinorgbio.2010.09.012
56. Smith-Jones P. M., Stolz B., Bruns C., et al. Gallium-67/gallium-68-[DFO]-octreotide—a potential radiopharmaceutical for PET imaging of somatostatin receptorpositive tumors: synthesis and radiolabeling in vitro and preliminary in vivo studies. J. Nucl. Med. 1994;35(2):317–325.
57. Mathias C.J., et al. Receptor-mediated targeting of 67Ga-deferoxamine-folate to folate-receptor-positive human KB tumor xenografts. Nucl. Med. Biol. 1999;26(1):23–25. https://doi.org/10.1016/S0969-8051(98)00076-6
58. Thomas W. Price, et al. Evaluation of a bispidinebased chelator for gallium‐68 and of the porphyrin conjugate as PET/PDT theranostic agent. Chem. Eur. J. 2020;26(34):7602–7608. https://doi.org/10.1002/chem.201905776
59. Imberti C., et al. Manipulating the in Vivo Behaviour of 68Ga with Tris(Hydroxypyridinone) Chelators: Pretargeting and Blood Clearance. Int. J. Mol. Sci. 2020;21(4):1496. https://doi.org/10.3390/ijms21041496
60. Zhou X., et al. Design and synthesis of a new conjugate of a tris(3-hydroxy-4-pyridinone) chelator (KC18) for potential use as gallium-68-labeled prostate-specific membrane antigen (PSMA) radiopharmaceutical. Results in Chemistry. 2021;3:100240. https://doi.org/10.1016/j.rechem.2021.100240
61. Kowol C.R., Berger R., Eichinger R., Roller A., et al. Gallium(III) and Iron(III) Complexes of α-N-Heterocyclic Thiosemicarbazones: Synthesis, Characterization, Cytotoxicity, and Interaction with Ribonucleotide Reductase. J. Med. Chem. 2007;50(6):1254–1265. https://doi.org/10.1021/jm0612618
62. Arion V.B., et al. Synthesis, structure, spectroscopic and in vitro antitumour studies of a novel gallium(III) complex with 2-acetylpyridine (4)N-dimethylthiosemicarbazone. J. Inorg. Biochem. 2002;91(1):298–305. https://doi.org/10.1016/S0162-0134(02)00419-1
63. Qi J., Yao Q., Qian K., Tian L., et al. Gallium(III) complexes of α-N-heterocyclic piperidylthiosemicarbazones: Synthesis, structure-activity relationship, cellular uptake and activation of caspases-3/7/9. J. Inorg. Biochem. 2018;186:42–50. https://doi.org/10.1016/j.jinorgbio.2018.05.005
64. Qi J., et al. Synthesis, antiproliferative activity and mechanism of gallium(III)-thiosemicarbazone complexes as potential anti-breast cancer agents. Eur. J. Med. Chem. 2018;154:91–100. https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2018.05.016
65. Firmino G. dos S.S., André S.C., Hastenreiter Z., Campos V.K., et al. In vitro assessment of the cytotoxicity of Gallium(III) complexes with Isoniazid-Derived Hydrazones: Effects on clonogenic survival of HCT-116 cells. Inorganica Chim. Acta. 2019;497:119079. https://doi.org/10.1016/j.ica.2019.119079
66. Kumar K., et al. Highly potent anti-proliferative effects of a gallium(III) complex with 7-chloroquinoline thiosemicarbazone as a ligand: synthesis, cytotoxic and antimalarial evaluation. Eur. J. Med. Chem. 2014;86:81–86. https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2014.08.054
67. Doot R.K., Young A.J., Daube-Witherspoon M.E., Alexoff D., Labban K.J., Lee H., Wu Z., Zha Z., Choi S.R., Ploessl K.H. Biodistribution, dosimetry, and temporal signal-to-noise ratio analyses of normal and cancer uptake of [68Ga] Ga-P15-041, a gallium-68 labeled bisphosphonate, from first-in-human studies. Nucl. Med. Biol. 2020;86:1–8. https://doi.org/10.1016/j.nucmedbio.2020.04.002
Дополнительные файлы
|
1. Комплексы DOTA (1) и NOTA (3) с галлием | |
Тема | ||
Тип | Исследовательские инструменты | |
Посмотреть
(492KB)
|
Метаданные ▾ |
- Рассмотрены макроциклические бифункциональные хелаторы, образующие стабильные in vivo комплексы с 68Ga, а также ациклические хелаторы.
- Для создания эффективного бифункционального хелатирующего агента нужно принимать во внимание стабильность и инертность хелатора и его комплексов в физиологических условиях, липофильность, кинетику комплексообразования, селективность хеланирования, комбинаторность базовой структуры, а также экономические аспекты: доступность сырья, сложность схемы синтеза.
Рецензия
Для цитирования:
Поливанова А.Г., Соловьёва И.Н., Ботев Д.О., Юрьев Д.Ю., Мыльникова А.Н., Ощепков М.С. Бифункциональные хелаторы к катиону галлия. Тонкие химические технологии. 2022;17(2):107-130. https://doi.org/10.32362/2410-6593-2022-17-2-107-130
For citation:
Polivanova A.G., Solovieva I.N., Botev D.O., Yuriev D.Y., Mylnikova A.N., Oshchepkov M.S. Bifunctional gallium cation chelators. Fine Chemical Technologies. 2022;17(2):107-130. https://doi.org/10.32362/2410-6593-2022-17-2-107-130