ВЛИЯНИЕ ПОЛИМИКСИНА В НА ФОРМИРОВАНИЕ БИОПЛЕНКИ БАКТЕРИЕЙ Methylophilus quaylei НА ПОЛИПРОПИЛЕНЕ И ТЕФЛОНЕ
https://doi.org/10.32362/2410-6593-2018-13-2-31-39
Аннотация
Ключевые слова
Об авторах
А. М. МохамедРоссия
аспирантка кафедры биотехнологии и промышленной фармации
119571, Россия, Москва, проспект Вернадского, д. 86
Д. Н. Амзаева
Россия
студентка кафедры биотехнологии и промышленной фармации
119571, Россия, Москва, проспект Вернадского, д. 86
А. Б. Пшеничникова
Россия
доцент, кандидат химических наук, доцент кафедры биотехнологии и промышленной фармации
119571, Россия, Москва, проспект Вернадского, д. 86
В. И. Швец
Россия
академик РАН, профессор, доктор химических наук, профессор кафедры биотехнологии и промышленной фармации
119571, Россия, Москва, проспект Вернадского, 86
Список литературы
1. Costerton J.W. Overview of microbial biofilms // J. Ind. Microbiol. 1995. V. 15. P. 137-140.
2. Flemming H.C., Wingender J., Szewzyk U., Steinberg P., Rice S.A., Kjelleberg S. Biofilms: An emergent form of bacterial life // Nat. Rev. Microbiol. 2016. V. 14. № 9. P. 563-575.
3. Flemming H.C., Wingender J. The biofilm matrix // Nat. Rev. Microbiol. 2010. V. 8. Р. 623-633.
4. Zhurina M.V., Gannesen A.V., Zdorovenko E.L., Plakunov V.K. Composition and functions of the extracellular polymer matrix of bacterial biofilms // Microbiology. 2014. V. 83. № 6. P. 713-722.
5. Jiao Y., Cody G.D., Harding A.K., Wilmes P., Schrenk M., Wheeler K.E., Banfield J.F., Thelen M.P. Characterization of extracellular polymeric substances from acidophilic microbial biofilms // Appl. Environ. Microbiol. 2010. V. 76. № 9. P. 2916-2922.
6. Stewart P.S., Costerton J.W. Antibiotic resistance of bacteria in biofilms // Lancet. 2001. V. 358. P. 135-138.
7. Плакунов В.К., Мартьянов С.В., Тетенева Н.А., Журина М.В. Управление формированием микробных биопленок: анти- и пробиопленочные агенты // Микробиология. 2017. Т. 86. № 4. С. 402-420.
8. Costerton J.W., Stewart P.S., Greenberg E.P. Bacterial biofilms: A common cause of persistent infections // Science. 1999. V. 284. Issue 5418. P. 1318-1322.
9. Rabin N., Zheng Y., Opoku-Temeng C., Du Y., Bonsu E., Sintim H.O. Agents that inhibit bacterial biofilm formation // Future Med. Chem. 2015. V. 7. № 5. P. 647-671.
10. Petrova O.E., Sauer K. Escaping the biofilm in more than one way: Desorption, detachment or dispersion // Curr. Opin. Microbiol. 2016. V. 30. Р. 67-78.
11. Estrela A.B., Abraham W.R. Combining biofilmcompounds and controlling antibiotics as a promising new way to control biofilm infections // Pharmaceuticals. 2010. V. 3. Р. 1374-1393.
12. Koo H., Allan R.N., Howlin R.P., Stoodley P., Stoodley L.H. Targeting microbial biofilms: Current and prospective therapeutic strategies // Nature Rev. Microbiol. 2017. V. 15. № 12. P. 740-755.
13. Стрелкова Е.А., Журина М.В., Плакунов В.К., Беляев С.С. Стимуляция антибиотиками процесса формирования бактериальных биопленок // Микробиология. 2012. Т. 81. № 2. С. 282-285.
14. Wu S., Li X., Gunawardana M., Maguire K., Guerrero-Given D., Schaudinn C., Wang C., Baum M.M., Webster P. Beta-lactam antibiotics stimulate biofilm formation in non-typeable haemophilus influenzae by up-regulating carbohydrate metabolism // PLoS ONE. 2014. V. 9. Iss. 7. e99204.
15. Kaplan J.B. Antibiotic-induced biofilm formation // Int. J. Artif. Organs. 2011. V. 34. № 9. P.737-751.
16. Velkov T., Thompson P. E., Nation R. L., Li J. Structure-activity relationships of polymyxin antibiotics // J. Med. Chem. 2010. V. 53. № 5. P. 1898-1916.
17. Rabanal F., Cajal Y. Recent advances and perspectives in the design and development of polymyxins // Nat. Prod. Rep. 2017. V. 6. № 7. P. 886-908.
18. Velkov T., Roberts K.D., Nation R.L., Thompson P.E., Li J. Pharmacology of polymyxins: New insights into an ‘old’ class of antibiotics // Future Microbiol. 2013. V. 8. № 6. Р. 711-724.
19. Kaye K.S., Pogue J.M., Tran T.B., Nation R.L., Li J. Agents of last resort: Polymyxin resistance // Infect. Dis. Clin. North. Am. 2016. V. 30. № 2. P. 391-414.
20. Srinivas P., Rivard K. Polymyxin resistance in Gram-negative pathogens // Curr. Infect. Dis. Rep. 2017. V. 19. № 11. P. 38.
21. Jeannot K., Bolard A., Plesiat P. Resistance to polymyxins in Gram-negative organisms // Int. J. Antimicrob. Agents. 2017. V. 49. № 5. P. 526-535.
22. Brown P., Dawson M.J. Development of new polymyxin derivatives for multi-drug resistant Gramnegative infections // J. Antibiot. (Tokyo). 2017. V. 70. № 4. P. 386-394.
23. Pye C.C., Yu A.A., Weese J.S. Evaluation of biofilm production by Pseudomonas aeruginosa from canine ears and the impact of on antimicrobial susceptibility in vitro // Vet. Dermatol. 2013. V. 24. № 4. P. 446-449. e98-9.
24. Doronina N., Ivanova E., Trotsenko Y., Pshenichnikova A., Kalinina E., Shvets V. Methylophilus quaylei sp. nov., a new aerobic obligately methylotrophic bacterium // System. Appl. Microbiol. 2005. V. 28. P. 303-309.
25. Пшеничникова А.Б., Гаврилова Е.С., Швец В.И. Влияние физико-химических свойств клеточной поверхности грамотрицательных бактерий на резистентность к стрептомицину // Вестник МИТХТ. 2011. Т. 6. № 2. С. 43-50.
26. Отман С.А.М., Пшеничникова А.Б., Швец В.И. Влияние экзогенных жирных кислот на рост и продукцию экзополисахарида облигатной метилотрофной бактерии Methylophilus quaylei // Прикл. биохимия и микробиология. 2012. Т. 48. № 2. С. 226-231.
27. ОФС.1.7.2.0008.15. Определение концентрации микробных клеток. Государственная фармакопея Российской Федерации. XIII издание. Т.II. Москва, 2015. OFS.1.7.2.0008.15.
28. Rosenberg M., Gutniek D., Rosenberg E. Adherence of bacteria to hydrocarbons: a simple method for measuring cell surface hydrophobicity // FEMS Microbiol. Lett. 1980. V. 9. P. 29-33.
29. Anesti V., McDonald I.R., Ramaswamy M., Wade W.G., Kelly D.P., Wood A.P. Isolation and molecular detection of methylotrophic bacteria occurring in the human mouth // Environmen. Microbiol. 2005. V. 7. № 8. P. 1227-1238.
30. Gogleva A.A., Kaparullina E.N., Doronina N.V., Trotsenko Y.A. Methylophilus flavus sp. nov., and Methylophilus luteus sp. nov., aerobic, methylotrophic bacteria associated with plants // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2010. V. 60. P. 2623-2628.
31. Cerca N., Pier G. B., Vilanova M., Oliveira R., Azeredo J. Quantitative analysis of adhesion and biofilm formation on hydrophilic and hydrophobic surfaces of clinical isolates of Staphylococcus epidermidis // Res. Microbiology. 2005. V. 156. № 4. P. 506-514.
32. Oliveira R., Azeredo J., Fonseca A.P. The role of hydrophobicity in bacterial adhesion // Hydrophobicity and Adhesion. 2001. P. 11-22.
33. Maitz M.F. Applications of synthetic polymers in clinical medicine // Biosurface and Biotribology. 2015. V. 1. Р. 161-176.
34. Lenhard J.R., Nation R.L., Tsuji B.T. Synergistic combinations of polymyxins // Int. J. Antimicrob. Agents. 2016. V. 48. № 6. Р. 607-613.
Рецензия
Для цитирования:
Мохамед А.М., Амзаева Д.Н., Пшеничникова А.Б., Швец В.И. ВЛИЯНИЕ ПОЛИМИКСИНА В НА ФОРМИРОВАНИЕ БИОПЛЕНКИ БАКТЕРИЕЙ Methylophilus quaylei НА ПОЛИПРОПИЛЕНЕ И ТЕФЛОНЕ. Тонкие химические технологии. 2018;13(2):31-39. https://doi.org/10.32362/2410-6593-2018-13-2-31-39
For citation:
Mohamed A.M., Amzaeva D.N., Pshenichnikova A.B., Shvets V.I. INFLUENCE OF POLYMYXIN B ON THE FORMATION OF BIOFILMS BY BACTERIUM Methylophilus quaylei ON POLYPROPYLENE AND TEFLON. Fine Chemical Technologies. 2018;13(2):31-39. (In Russ.) https://doi.org/10.32362/2410-6593-2018-13-2-31-39